Objetivo: Buscar en las muestras biológicas la presencia de los distintos parásitos para tener un conocimiento más amplio sobre ellos. Aplicar la técnica repetidas veces hasta tener claro el procedimiento de ésta y aprender una de las más eficientes en lo que hallazgo de parásitos se refiere.

Fundamento:Las parasitosis intestinales son un conjunto de padecimientos causados principalmente por protozoarios y helmintos y considerados un problema de salud pública.

El examen coproparasitoscopico (CPS) es un conjunto de técnicas diagnósticas que constituyen la indicación para la identificación de la mayoría de las enteroparasitosis causadas por protozoarios o helmintos. Su eficacia y sensibilidad para establecer un diagnóstico correcto dependen de la adecuada indicación y preparación de la muestra, los datos clínicos y antecedentes de interés que sean aportados al laboratorio y de su correcta y completa ejecución con examen directo microscópico.

Faust es el método mas usado y efectivo, en este se precipitan los parásitos por centrifugación después de haber filtrado la muestra.

Material:                                                                               

3 Vasos desechables

2 Aplicadores

1 Abate lenguas

1 Pipeta 10 ml

1 Pipetón

3 Gasas

4 Tubos de ensaye 13 x 100

1 Asa de platino

2 Conos de papel

2 cubreobjetos/portaobjetos

4 Tapones de tubo de ensayo

1 Gradilla

Reactivos:

Solución salina 0.85%

Lugol

Azul de metileno

Sulfato de zinc 1.180° Be

 

Procedimiento:

  1. Colocar de 1 a 2g de heces (tamaño de una nuez) en 10 ml de solución salina 0.85%.
  2. Filtrar con doble gasa y recibir el filtrado en un tubo de ensayo de 13 x 100.
  3. Centrifugar el filtrado a 2500 rpm por 3 min y decantar el sobrenadante.
  4. El sedimento se suspende con solución salina 0.85% y se rompe el sedimento.
  5. Se reconstruye el sedimento con una nueva solución salina y se vuelve a centrifugar.
  6. Se repite el paso 4 y 5 2 o 3 veces más hasta que el último sobrenadante este claro.
  7. Se decanta el último sobrenadante y se agrega el sulfato de zinc, se agrega más sulfato y se deja reposar por 5 minutos.
  8. Se centrifuga el tubo con la muestra y el sulfato de zinc a 2500 rpm por 1 min.
  9. Se realizan los frotis con lugol de la película superior, los huevecillos y los quistes hacienden a la superficie (los trofozoitos son destruidos).
  10. Moviendo lo menos posible el líquido sobrenadante, tómese varias porciones de la película superficial con el asa y coloque una laminilla.
  11. Agréguese una gota de yodo, mézclese, coloque el cubreobjetos.
  12. Observar al microscopio con objetivo de 10x y 40x.

 

Observaciones:

Examen macroscópico

Muestra Cantidad Forma Consistencia Olor viscosidad Restos de alimentos olor
1 30gr Puroide Pastosa Fuerte No No Verdoso
2 30gr Líquida Fluida Pútrido Viscosa Si Marrón amarillo

 

Resultados:

Examen microscópico

Muestra Resultados
1 No se encontró presencia viva (parásitos) en la muestras
2 Presencia de misteriosos círculos naranja intenso dispersos en la muestra

 

 

Cuestionario:

  1. ¿Cuál fue el año en que fue diseñado esta técnica? 1938
  2. ¿Cuál es la solución principal que se utiliza en ésta técnica y cuál es su densidad? Sulfato de Zinc y su densidad es de 1.180° Bé
  3. ¿En qué consiste esta técnica?Consistehomogeneizar con solución salina una pequeña porción de la materia fecal, luego se centrifuga y se lava una o dos veces entre las cuales se decanta el líquido sobrenadante; el último botón se homogeniza con la solución de sulfato, se vuelve a centrifugar y se toma el sobrenadante con una asa de platino o con un aplicador de madera. Luego se homogeniza con lugol, se coloca un cubreobjetos y se observa al microscopio.
  4. ¿Por qué se recomienda este método como eficiente? Es el más eficiente para los quistes y protozoos, parahymenolepis nana y huevos de nematodos.
  5. ¿Por qué no es recomendable? No es recomendable para huevecillos operculados (de trematodos distintos a los de esquistozomas)
  6. Investiga el nombre completo del científico que la descubrió: Ernest Carroll Faust Papers

Conclusiones:

La finalidad de la practica es la búsqueda de parásitos hasta el momento no hemos encontrado. Con la práctica continua llegaremos a encontrarlos. En las practicas anteriores  y en esta ultima solo hemos hallado grasa, fibra .y restos vegetales e incluso creímos encontrar una amiba pero  aún no sabemos lo que es. Aún así seguiremos practicando esta técnica, pues como laboratoristas clínicos tenemos como vital importancia aprender estas técnicas, cuándo estemos buscando la causa de enfermedad en nuestros pacientes la identificación de parásitos por medio de esta técnica nos ayudará para conocer la causa de enfermedad y así aplicar un tratamiento adecuado.

Bibliografía: Parasitología médica de las moléculas a la enfermedad-Autor Berelin Flores Romero Cabello-Editorial Mc Graw Hill

http://sharon-parasitologia.blogspot.mx/2011/09/metodo-de-concentracion-flotacion-de.html

http://oculus.nlm.nih.gov/cgi/f/findaid/findaid-idx?c=nlmfindaid;idno=faust170

 

Contribución de: Cossio Juárez Osmar Emanuel